количество статей
7206
Загрузка...
Исследования

Влияние различных температур ирригационного раствора NaCl 0,9% и наличия в нем эпинефрина на гемостаз. Эксперимент in vivo

А.А. Подойницын
Н.А. Амосов
Д.А. Кузнецова
Д.В. Романов
Э.А. Мамедов
С.В. Гармаш
осковский областной научно-исследовательский институт им. М.Ф. Владимирского
Национальный медицинский исследовательский центр «Лечебно-реабилитационный центр», Москва
Адрес для переписки: Дарья Алексеевна Кузнецова, dasha_kuzn96@mail.ru
Для цитирования: Подойницын А.А., Амосов Н.А., Кузнецова Д.А. и др. Влияние различных температур ирригационного раствора NaCl 0,9% и наличия в нем эпинефрина на гемостаз. Эксперимент in vivo. Эффективная фармакотерапия. 2025; 21 (36): 34–39
DOI 10.33978/2307-3586-2025-21-36-34-39
Эффективная фармакотерапия. 2025. Том 21. № 36. Урология и нефрология
  • Аннотация
  • Статья
  • Ссылки
  • English
Цель. Изучение влияния различных температур ирригационного раствора NaCl 0,9%, а также наличия в нем 0,1%-ного раствора эпинефрина на продолжительность кровотечения и объем кровопотери в эксперименте in vivo
Материал и методы. Экспериментальное исследование включило в себя два этапа. Первый этап проведен на 52 самцах крыс линии Wistar 12-месячного возраста с массой тела около 300 г. В качестве ирригационного раствора использован 0,9%-ный раствор NaCl комнатной температуры 24 °С, подогретый до 39 °С и охлажденный до 4 °С, а также 0,9%-ный раствор NaCl 24 °С с добавлением 0,1%-ного раствора эпинефрина. Применены две валидированные модели кровотечения: хвостовое и паренхиматозное; измерены время кровотечения и объем кровопотери. В первом случае было использовано 32 лабораторных крысы (в каждой группе сравнения по 8 животных), во втором – 20 (в каждой группе сравнения по 5 животных).
На втором этапе эксперимента, включившем в себя 90 пациентов с доброкачественной гиперплазией предстательной железы, было изучено влияние различных температур 0,9%-ного раствора NaCl на объем интраоперационной кровопотери во время выполнения биполярной трансуретральной резекции простаты. Все пациенты были разделены на три равные группы (n = 30) в зависимости от температуры используемого раствора: 2–4 °С, 24 °С и 37–39 °С.
Результаты. Выявлено, что в эксперименте с созданием модели хвостового кровотечения длительность кровотечения статистически значимо различалась между группами (р < 0,001). При попарном сравнении групп были выявлены достоверные различия во всех группах сравнения (р < 0,05) за исключением групп, где был использован раствор NaCl 0,9% с добавлением 0,1%-ного раствора эпинефрина (324,5 (223,7; 333,7) c) и раствор NaCl 0,9%, температура которого составляла 24 °С (447,5 (250,5; 550,0) c), р = 0,455. Наименьшее время кровотечения было отмечено в группе с ирригационным раствором, подогретым до 39 °С – 77,0 (61,2; 125,0) c, наибольшее – с охлажденным до 4 °С – 1270 (1016; 1528) c. В эксперименте с созданием паренхиматозного кровотечения объем кровопотери также статистически значимо различался между группами (р = 0,007). При попарном сравнении групп достоверные различия концентрации гемоглобина в ирриганте были выявлены между группой с охлажденным до 4 °С раствором NaCl 0,9% (4,0 (3,1; 4,8) г/л), группой с ирригационным раствором 24 °С (15,0 (7,3; 16,7) г/л), р = 0,014 и группой с ирригационным раствором 39 °С (14,0 (13,4; 19,9) г/л), р = 0,001, а также группой, где использовали 0,9%-ный раствор NaCl с добавленным 0,1%-ным раствором эпинефрина (9,9 (8,2; 15,2) г/л), р = 0,026.
При проведении второго этапа эксперимента выявлено, что интраоперационная кровопотеря статистически значимо различалась во всех группах сравнения (p ≤ 0,016). Наименьший объем кровопотери был зафиксирован в группе охлажденного до 2–4°С физиологического раствора, медиана составила 55 (49,0; 75,0) мл. Применение подогретого до 37–39 °С 0,9%-ного раствора NaCl также способствовало уменьшению интраоперационной кровопотери, медиана составила 70 (62,7; 85,0) мл. В группе с ирригационным раствором комнатной температуры 24 °С объем кровопотери был равен 119 (83,7; 134,2) мл.
Заключение. Проведение эксперимента позволило представить технологии ирригации, которые могут быть использованы на практике для улучшения результатов выполнения эндоурологических оперативных вмешательств.
  • КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: доброкачественная гиперплазия предстательной железы, ирригационные растворы, ирригационные технологии, эпинефрин
Цель. Изучение влияния различных температур ирригационного раствора NaCl 0,9%, а также наличия в нем 0,1%-ного раствора эпинефрина на продолжительность кровотечения и объем кровопотери в эксперименте in vivo
Материал и методы. Экспериментальное исследование включило в себя два этапа. Первый этап проведен на 52 самцах крыс линии Wistar 12-месячного возраста с массой тела около 300 г. В качестве ирригационного раствора использован 0,9%-ный раствор NaCl комнатной температуры 24 °С, подогретый до 39 °С и охлажденный до 4 °С, а также 0,9%-ный раствор NaCl 24 °С с добавлением 0,1%-ного раствора эпинефрина. Применены две валидированные модели кровотечения: хвостовое и паренхиматозное; измерены время кровотечения и объем кровопотери. В первом случае было использовано 32 лабораторных крысы (в каждой группе сравнения по 8 животных), во втором – 20 (в каждой группе сравнения по 5 животных).
На втором этапе эксперимента, включившем в себя 90 пациентов с доброкачественной гиперплазией предстательной железы, было изучено влияние различных температур 0,9%-ного раствора NaCl на объем интраоперационной кровопотери во время выполнения биполярной трансуретральной резекции простаты. Все пациенты были разделены на три равные группы (n = 30) в зависимости от температуры используемого раствора: 2–4 °С, 24 °С и 37–39 °С.
Результаты. Выявлено, что в эксперименте с созданием модели хвостового кровотечения длительность кровотечения статистически значимо различалась между группами (р < 0,001). При попарном сравнении групп были выявлены достоверные различия во всех группах сравнения (р < 0,05) за исключением групп, где был использован раствор NaCl 0,9% с добавлением 0,1%-ного раствора эпинефрина (324,5 (223,7; 333,7) c) и раствор NaCl 0,9%, температура которого составляла 24 °С (447,5 (250,5; 550,0) c), р = 0,455. Наименьшее время кровотечения было отмечено в группе с ирригационным раствором, подогретым до 39 °С – 77,0 (61,2; 125,0) c, наибольшее – с охлажденным до 4 °С – 1270 (1016; 1528) c. В эксперименте с созданием паренхиматозного кровотечения объем кровопотери также статистически значимо различался между группами (р = 0,007). При попарном сравнении групп достоверные различия концентрации гемоглобина в ирриганте были выявлены между группой с охлажденным до 4 °С раствором NaCl 0,9% (4,0 (3,1; 4,8) г/л), группой с ирригационным раствором 24 °С (15,0 (7,3; 16,7) г/л), р = 0,014 и группой с ирригационным раствором 39 °С (14,0 (13,4; 19,9) г/л), р = 0,001, а также группой, где использовали 0,9%-ный раствор NaCl с добавленным 0,1%-ным раствором эпинефрина (9,9 (8,2; 15,2) г/л), р = 0,026.
При проведении второго этапа эксперимента выявлено, что интраоперационная кровопотеря статистически значимо различалась во всех группах сравнения (p ≤ 0,016). Наименьший объем кровопотери был зафиксирован в группе охлажденного до 2–4°С физиологического раствора, медиана составила 55 (49,0; 75,0) мл. Применение подогретого до 37–39 °С 0,9%-ного раствора NaCl также способствовало уменьшению интраоперационной кровопотери, медиана составила 70 (62,7; 85,0) мл. В группе с ирригационным раствором комнатной температуры 24 °С объем кровопотери был равен 119 (83,7; 134,2) мл.
Заключение. Проведение эксперимента позволило представить технологии ирригации, которые могут быть использованы на практике для улучшения результатов выполнения эндоурологических оперативных вмешательств.
Рис. 1. Создание модели хвостового кровотечения: этап отсечения 4 см от кончика хвоста лабораторной крысы
Рис. 1. Создание модели хвостового кровотечения: этап отсечения 4 см от кончика хвоста лабораторной крысы
Рис. 2. Создание модели паренхиматозного кровотечения: этап выполнения срединной лапаротомии
Рис. 2. Создание модели паренхиматозного кровотечения: этап выполнения срединной лапаротомии
Рис. 3. Создание модели паренхиматозного кровотечения: резецированный участок печени
Рис. 3. Создание модели паренхиматозного кровотечения: резецированный участок печени
Рис. 4. Длительность кровотечения в группах лабораторных крыс: модель хвостового кровотечения, n = 32
Рис. 4. Длительность кровотечения в группах лабораторных крыс: модель хвостового кровотечения, n = 32
Рис. 5. Объем кровопотери в группах лабораторных крыс: модель паренхиматозного кровотечения, n = 20
Рис. 5. Объем кровопотери в группах лабораторных крыс: модель паренхиматозного кровотечения, n = 20
Рис. 6. Объем кровопотери в группах пациентов, n = 90
Рис. 6. Объем кровопотери в группах пациентов, n = 90

Введение

В октябре 1877 г. немецкий ученый М. Нитце впервые выполнил цистоскопию, положив начало эндоскопической урологии [1]. В то время первостепенной задачей орошения мочевого пузыря являлось обеспечение достаточной видимости операционного поля, для чего использовали дистиллированную воду. Однако с появлением более сложных и длительных эндоскопических оперативных вмешательств стали возникать интра- и послеоперационные осложнения, связанные, в том числе, с несовершенством ирригационных растворов. Уже в 1952 г. Ч.Д. Криви заявил о том, что использование дистиллированной воды в качестве ирриганта при выполнении монополярной трансуретральной резекции простаты (ТУРП) приводит к развитию осмотического гемолиза [2]. В результате накопления клинического опыта были сформированы основные требования к физико-химическим свойствам ирригационных растворов: прозрачность, стерильность, апирогенность, электропроводность, изотоничность плазме крови [3]. Тем не менее существующие в настоящее время технологии ирригации и ирригационные растворы не лишены недостатков.

При выполнении трансуретральной резекции простаты повреждение кровоснабжающих ее сосудов неизбежно. Давление в венозных синусах составляет 40 см водного столба, что делает возможной абсорбцию в кровяное русло ирригационного раствора, подаваемого под давлением 60 см водного столба и выше. Последнее редко (в 0,1–1% случаев) приводит к развитию ТУР-синдрома, но часто – к увеличению объема циркулирующей крови [3–5]. Доказано, что гиперволемия обуславливает снижение уровня плазменных факторов свертывания крови, вследствие чего увеличивается время образования кровяного сгустка. В свою очередь продолженное интраоперационное кровотечение приводит к гидремии, что усугубляет уже существующую гипокоагуляцию [4, 5]. Интенсивное интраоперационное кровотечение может стать причиной не только развития анемии и, как следствие, гипоксии тканей, но и недостаточной визуализации операционного поля, что увеличивает риск возникновения интраоперационных осложнений [6–8].

Абсорбция компонентов ирригационных растворов в кровяное русло также может привести к развитию нежелательных явлений. Известно, что глицин способен оказывать кардио- и нефротоксическое действие на организм человека, его метаболит аммиак – нейротоксическое [9]. Абсорбция большого количества сорбита и маннита вызывает гипергликемию и лактоацидоз [10].

В современной научной литературе представлено множество экспериментальных исследований, направленных на предупреждение развития вышеуказанных жизнеугрожающих состояний. В одном из них сообщено о том, что присутствие транексамовой кислоты в ирригационном растворе снижает объем интраоперационной кровопотери [11]. Профессор Ураков А.Л. в научных публикациях утверждает, что орошение кровоточащей раны жидкостью, подогретой в пределах безопасного диапазона, а именно с 37 до 42 °С, ускоряет процесс свертывания крови, в то время как охлаждение раны с 37 до 20 °С замедляет его [12]. Другие же авторы, напротив, приводят данные об уменьшении интраоперационной кровопотери при использовании ирригационной жидкости, охлажденной до 2 °С [13, 14].

Мы обнаружили несколько статей, в которых было оценено влияние интрапростатических инъекций эпинефрина на результаты выполнения ТУРП. Авторы утверждают, что это позволило не только уменьшить интраоперационную кровопотерю, но и снизить риск развития ТУР-синдрома [8, 15, 16]. Поскольку широкому распространению данного метода предупреждения интра- и послеоперационных осложнений препятствует необходимость наличия специальных навыков и оборудования, мы решили упростить его, добавив эпинефрин в ирригационный раствор.

В нашей статье мы делимся результатами изучения влияния ирригационных растворов различных температур и ирригационного раствора с добавлением эпинефрина на продолжительность кровотечения и объем кровопотери в эксперименте in vivo.

Материал и методы

Для изучения влияния различных температур ирригационного раствора на продолжительность кровотечения и объем кровопотери мы использовали 0,9%-ный раствор NaCl комнатной температуры (24 °С), а также нагретый до 39 °С и охлажденный до 4 °С. Диапазон температур был определен на основании изученной научной литературы. Нагревание жидкостей для внутривенного введения до 42 °С рекомендовано для лечения гипотермии [16]. Безопасная нижняя граница охлаждения ирригационного раствора, подтвержденная в проводимых ранее экспериментальных исследованиях, составила 2 °С [18]. Также мы добавили 1 мл 0,1%-ного раствора эпинефрина к 250 мл физиологического раствора.

В эксперименте были использованы самцы крыс линии Wistar 12-месячного возраста с массой тела около 300 г. Лабораторных животных содержали в соответствии с ГОСТ 33216-2014 «Межгосударственный стандарт. Руководство по содержанию и уходу за лабораторными животными». Эксперимент был одобрен этическим комитетом и выполнен в соответствии со статьей 20 «Требования при обращении с лабораторными животными» модельного закона Межпарламентской Ассамблеи государств. Для общей анестезии лабораторных животных был использован лекарственный препарат Золетил 50 мг, вводимый внутривенно. Прооперированные животные были выведены из эксперимента немедленно.

В эксперименте мы использовали две валидированные модели – хвостового и паренхиматозного кровотечения у лабораторных грызунов [19]. Были измерены время кровотечения и объем кровопотери с целью изучения гемостаза.

Для создания модели хвостового кровотечения было проведено отсечение 4 см от кончика хвоста (рис. 1). Отсеченную часть утилизировали, хвост помещали в пробирку с 10 мл одного из ирригационных растворов и засекали время (с) до окончания кровотечения. Размер выборки n составил 32 лабораторных крысы, в каждой группе по 8 животных.

Для создания модели паренхиматозного кровотечения после выполнения срединной лапаротомии (рис. 2) левую долю печени резецировали (рис. 3). Размер резецированного участка был равен 1,5 × 3 см. Затем 20 мл ирригационного раствора вливали в брюшную полость с экспозицией 15 мин. После чего ирригационный раствор аспирировали и измеряли в нем уровень гемоглобина (г/л) с помощью гематологического анализатора. Размер выборки n составил 20 лабораторных крыс, в каждой группе по 5 животных.

В когорту второго этапа экспериментального исследования вошло 90 пациентов с диагнозом доброкачественной гиперплазии предстательной железы, которым была выполнена биполярная трансуретральная резекция простаты (БиТУРП). Протокол исследования был утвержден решением ученого совета и получил одобрение независимого комитета по этике при ГБУЗ МО МОНИКИ им. М.Ф. Владимирского на 11-м заседании от 20.10.2022 г. От всех участников эксперимента было получено добровольное информированное согласие.

Все пациенты были разделены на три равные группы (n = 30) в зависимости от температуры используемого раствора: 2–4 °С, 24 °С и 37–39 °С. Объем интраоперационной кровопотери измеряли гемихромным методом, разработанным А.А. Ахремом и соавт. (1989 г.), и усовершенствованным С.В. Поповым и соавт. (2020 г.). Данный метод основан на спектрофотометрическом анализе ирригационного раствора, используемого при выполнении БиТУРП, с целью определения концентрации гемоглобина и вычисления объема интраоперационной кровопотери Vик (отношение содержания гемоглобина во всем объеме промывных вод к концентрации гемоглобина в крови) согласно указанной формуле:

Vик = (А540 × F) × Vd / CHb, где А540 – значение абсорбции опытной пробы за вычетом абсорбции контроля реактивов; F – фактор пересчета на концентрацию гемоглобина, составляющий 398 / 251 = 1,586; Vd – общий объем промывных вод, полученных от пациента (л); CHb – концентрация гемоглобина в крови до операции.

Для статистической обработки полученных данных использовали программы Microsoft office Excel 2007 и IBM SPSS версии 26.0.

Учитывая, что распределение полученных количественных показателей отличалось от нормального, были рассчитаны медиана, первый и третий квартили (интерквартильный размах Me (25Q; 75Q)). Для проверки нулевой гипотезы был использован непараметрический критерий Краскела – Уоллиса. Для множественного парного сравнения применялся метод наименьшей значимой разности. Различия между группами наблюдения считали статистически значимыми при р < 0,05.

Результаты и обсуждение

Выявлено, что в эксперименте с созданием модели хвостового кровотечения длительность кровотечения статистически значимо различалась в группах (р < 0,001). При попарном сравнении групп были выявлены достоверные различия во всех группах сравнения (р < 0,05) за исключением групп, где был использован 0,9%-ный раствор NaCl с добавлением 0,1%-ного раствора эпинефрина, длительность кровотечения – 324,5 (223,7; 333,7) c, и раствор NaCl 0,9% комнатной температуры (24 °С), длительность кровотечения – 447,5 (250,5; 550,0) c, р = 0,455. Наименьшее время кровотечения было отмечено в группе с ирригационным раствором, подогретым до 39 °С – 77,0 (61,2; 125,0) c, наибольшее – с охлажденным до 4 °С – 1270 (1016; 1528) c (рис. 4).

В эксперименте с созданием паренхиматозного кровотечения объем кровопотери также статистически значимо различался в группах сравнения (р = 0,007). При попарном сравнении групп достоверные различия концентрации гемоглобина в ирриганте были выявлены между группой с охлажденным до 4 °С раствором 0,9%-ного NaCl – 4,0 (3,1; 4,8) г/л; группой с ирригационным раствором 24 °С – 15,0 (7,3; 16,7) г/л, р = 0,014; группой с ирригационным раствором 39 °С – 14,0 (13,4; 19,9) г/л, р = 0,001; группой с 0,9%-ным раствором NaCl с добавлением 0,1%-ного раствора эпинефрина – 9,9 (8,2; 15,2) г/л, р = 0,026 (рис. 5).

Несмотря на сообщения об эффективности применения интрапростатических инъекций 0,1%-ного раствора эпинефрина как метода, позволяющего сократить интраоперационную кровопотерю и риск развития ТУР-синдрома [8, 15, 16], мы не достигли схожих результатов при использовании 0,9%-ного раствора NaCl с добавлением 0,1%-ного раствора эпинефрина в качестве ирригационной жидкости. Вероятно, это связано с различием способов введения лекарственного препарата. При орошении 0,9%-ным раствором NaCl с добавлением 0,1%-ного раствора эпинефрина биодоступность последнего недостаточна для достижения фармакологического эффекта.

При проведении второго этапа эксперимента выявлено, что интраоперационная кровопотеря статистически значимо различалась во всех группах сравнения (p ≤ 0,016) (рис. 6). Наименьший объем кровопотери был зафиксирован в группе охлажденного до 2–4 °С физиологического раствора, медиана составила 55 (49,0; 75,0) мл. Применение подогретого до 37–39 °С 0,9%-ного раствора NaCl также способствовало уменьшению интраоперационной кровопотери, медиана составила 70 (62,7; 85,0) мл. В группе с ирригационным раствором комнатной температуры 24 °С объем кровопотери был равен 119 (83,7; 134,2) мл.

Заключение

В эксперименте с созданием модели хвостового кровотечения выявлено, что применение подогретого до 39 °С 0,9%-ного раствора NaCl привело к сокращению времени кровотечения, что, вероятно, связано с сокращением времени образования кровяного сгустка. А в эксперименте с созданием модели паренхиматозного кровотечения к сокращению объема кровопотери привело использование охлажденного до 4 °С 0,9%-ного раствора NaCl, что, по мнению авторов, обусловлено рефлекторным спазмом сосудов микроциркуляторного русла в ответ на локальное воздействие холода.

Полученные результаты первого этапа экспериментального исследования были подтверждены при проведении второго этапа. Ирригация охлажденным до 2–4 °С физиологическим раствором способствовала наибольшему сокращению интраоперационной кровопотери. Однако орошение подогретым до 37–39 °С 0,9%-ным раствором NaCl не только сокращает объем интраоперационной кровопотери, но и снижает риск развития периоперационной гипотермии, что делает его применение более целесообразным.

Как уже было сказано ранее, основные требования к физико-химическим свойствам ирригационных растворов сформированы, однако сохраняется необходимость дальнейшего изучения этих свойств с целью улучшения результатов выполнения эндо­урологических оперативных вмешательств.

  • КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: доброкачественная гиперплазия предстательной железы, ирригационные растворы, ирригационные технологии, эпинефрин
1. Моргошия Т.Ш. Вклад гениального немецкого профессора М. Нитце в клиническую урологию (к 170-летию со дня рождения) (1848–1906). Сибирский медицинский журнал. 2018; 33 (1): 95–98.
2. Creevy C.D. Observations on hemolysis during transurethral resection: the effects of urea. Trans. Am. Assoc. Genitourin. Surg. 1951; 43: 8–12.
3. Мартов А.Г., Лопаткин Н.А. Руководство по трансуретральной резекции предстательной железы. М.: Триада-Х, 1997.
4. Shin H.J., Na H.S., Jeon Y., et al. The impact of irrigating fluid absorption on blood coagulation in patients undergoing transurethral resection of the prostate: a prospective observational study using rotational thromboelastometry. Medicine (Baltimore). 2017; 96 (2): e5468.
5. Shin H., Lee H., Na H. The effect of a mixture of 2.7% sorbitol-0.54% mannitol solution on blood coagulation: an in-vitro, observational healthy-volunteer study using rotational thromboelastometry (ROTEM). Korean J. Anesthesiol. 2019; 72 (2): 143–149.
6. Reich O., Gratzke C., Bachmann A., et al. Morbidity, mortality and early outcome of transurethral resection of the prostate: a prospective multicenter evaluation of 10,654 patients. J. Urol. 2008; 180 (1): 246–249.
7. Cornu J.N., Ahyai S., Bachmann A., et al. A systematic review and meta-analysis of functional outcomes and complications following transurethral procedures for lower urinary tract symptoms resulting from benign prostatic obstruction: an update. Eur. Urol. 2015; 67 (6): 1066–1096.
8. Stenmark F., Brudin L., Gunnarsson O., et al. A randomised study of TURP after intraprostatic injection of mepicacaine/adrenaline versus regular TURP in patients with LUTS/BPO. Scand. J. Urol. 2023; 58: 46–51.
9. Hahn R.G. Glycine 1.5% for irrigation should be abandoned. Urologia Internationalis. 2013; 91 (3): 249–255.
10. Trepanier C.A., Lessard M.R., Brochu J., Turcotte G. Another feature of TURP syndrome: hyperglycaemia and lactic acidosis caused by massive absorption of sorbitol. Br. J. Anaesth. 2001; 87 (2): 316–319.
11. Tawfick A., Mousa W., Fawaz El-Zh.A., Saafan A.M. Can tranexamic acid in irrigation fluid reduce blood loss during monopolar transurethral resection of the prostate? A randomised controlled trial. Arab. J. Urol. 2022; 20 (2): 94–99.
12. Ураков А.Л. Гипертермия и ишемия как факторы гемостаза. Успехи современного естествознания. 2013; 7: 8–12.
13. Robson C.J., Sales J.L. The effect of local hypothermia on blood loss during transurethral resection of the prostate. J. Urol. 1966; 95 (3): 393–395.
14. Подойницын А.А. Пути улучшения результатов хирургического лечения больных коралловидными и крупными почечными камнями. Автореф. дисс. ... докт. мед. наук. М.: ГБУЗ МО МОНИКИ им. М.Ф. Владимирского, 2018.
15. Sharma D.P., Harvey A.B. Does intraprostatic vasopressin prevent the transurethral resection syndrome? BJU Int. 2000; 86 (3): 223–226.
16. Lira-Dale A., Maldonado-Ávila M., Gil-García J.F., et al. Effect of intraprostatic epinephrine on intraoperative blood loss reduction during transurethral resection of the prostate. Int. Urol. Nephrol. 2012; 44 (2): 365–369.
17. Blumenberg A. Dosing heat: expected core temperature change with warmed or cooled intravenous fluids. Ther. Hypothermia Temp. Manag. 2021; 11 (4): 223–229.
18. Walton J.K., Rawstron E. The effect of local hypothermia on blood loss during transurethral resection of the prostate. Br. J. Urol. 1981; 53 (3): 258–260.
19. Morgan C.E., Prakash V.S., Vercammen J.M., et al. Development and validation of 4 different rat models of uncontrolled hemorrhage. JAMA Surg. 2015; 150 (4): 316–324.
The Effect of Different Temperatures of the Irrigation Solution, as Well as the Presence of Epinephrine in It, on Hemostasis. In Vivo Experiment

A.A. Podoynicin, PhD, N.А. Amosov, PhD, D.A. Kuznetsova, D.V. Romanov, PhD, E.A. Mamedov, PhD, S.V. Garmash, PhD

M.F. Vladimirsky Moscow Regional Research and Clinical Institute 
Natiomal Medical Research Treatment and Rehabilitation Centre, Moscow

Contact person: Daria A. Kuznetsova, dasha_kuzn96@mail.ru

Aim. Studying the effect of different temperatures of a 0.9% NaCl irrigation solution, as wellas the presence of a 0.1% epinephrine solution in it, on the duration of bleeding and the volume of bloodloss in an in vivo experiment.
For this purpose, two validated bleeding models were reproduced in Wistar laboratory rats: the tail bleed model and parenchymal bleeding models. The volume of blood loss during Bi-TURP was also measured in 90 patients with BPH.
Material and methods. The experimental study included two stages. The first stage was study was conducted on 52 male Wistar rats aged 12 months weighing about 300 g. The irrigation solution was 0.9% NaCl at room temperature – 24 °С, as well as heated to 39 °С and cooled to 4 °С, as well as 0.9% NaCl (24 °С) with the addition of 0.1% epinephrine solution. Two validated models of bleeding were used: tail and parenchymal bleeding models; bleeding time and volume of blood loss were measured. In the first case, 32 laboratory rats were used (8 animals in each comparison group), in the second – 20 (5 animals in each comparison group). In the second stage of the experiment, which included 90 patients with benign prostatic hyperplasia, the effect of different temperatures of 0.9% NaCl solution on the volume of intraoperative blood loss during bipolar transurethral prostate resection was studied. All patients were divided into three equal groups (n = 30) depending on the temperature of the solution used: 2–4 °C, 24 °C, and 37–39 °C.
Results. It was revealed that in the experiment with the creation of the tail bleeding model, the duration of bleeding statistically significantly differed between the groups (p < 0.001). When comparing the groups by pairs, significant differences were found in all comparison groups (p < 0.05), except for the groups that used a 0.9% NaCl solution with the addition of a 0.1% epinephrine solution (324.5 (223.7; 333.7) s) and a 0.9% NaCl solution, the temperature of which was 24 °С (447.5 (250.5; 550.0) s), p = 0.455. The shortest bleeding time was noted in the group with an irrigation solution heated to 39 °С (77.0 (61.2; 125.0) s), the longest – with one cooled to 4 °С (1270 (1016; 1528) s). In the experiment with creating parenchymal bleeding models, the volume of blood loss also statistically significantly differed between the groups (p = 0.007). In pairwise comparison of the groups, reliable differences in the concentration of hemoglobin in the irrigant were revealed between the group where 0.9% NaCl solution cooled to 4 °С was used (4.0 (3.1; 4.8) g/l) and the groups where the irrigation solution was used 24 °С (15.0 (7.3; 16.7) g/l), p = 0.014 and 39 °С (14.0 (13.4; 19.9) g/l), p = 0.001, as well as 0.9% NaCl solution to which 0.1% epinephrine solution was added (9.9 (8.2; 15.2) g/l), p = 0.026. 
During the second stage of the experiment, it was revealed that intraoperative blood loss differed statistically significantly in all comparison groups (p ≤ 0.016). The lowest volume of blood loss was recorded in the group of saline solution cooled to 2–4 °C, the median was 55 (49.0; 75.0) ml. The use of a 0.9% NaCl solution heated to 37–39 °C also contributed to a decrease in intraoperative blood loss, with a median of 70 (62.7; 85.0) ml. In the group using a room-temperature irrigation solution of 24 °C, the blood loss was 119 (83.7; 134.2) ml.
Conclusion. The experiment made it possible to present irrigation technologies that can be used in practice to improve the results of endourological surgical interventions.
ИНСТРУМЕНТЫ